Evaluación de productos bioactivos en semilleros en bandejas en el cultivo del pimiento (Capsicumannum,l) (Original)
Palabras clave:
Productos bioactivos; plántulas y semillerosResumen
El trabajo se desarrolló en una casa de cultivo perteneciente a la UBB de Cultivo Protegido de la EMA Paquito Rosales del Municipio Yara, con el objetivo de evaluar productos bioactivosen semilleros en bandejas del cultivo del pimiento híbrido LPD-5.Se utilizaron tres bandejas por tratamiento, asperjando las pequeñas plántulas a los 10 días después de la emergencia, una sola vez con los bioestimulantesQuitoMax y Pectimorf y cada 7 días con el microorganismo eficiente, Tratamiento 1: Aplicación de Microorganismo eficiente. (4 mL L-1de agua), Tratamiento 2: Aplicación de QuitoMax(300 mg ha-1 equivalente a 5 mL por mochila de 16 litros), Tratamiento 3: Aplicación de Pectimorf (16 mL por mochila de 16 litros), Tratamiento 4: Tratamiento control (asperjar las plántulas con agua corriente). Las mediciones se realizaron en el momento del trasplante por tratamientos, para ello fueron escogidas aleatoriamente 20 plantas, efectuándose las siguientes mediciones:Número de hojas por plantas, Altura de las plantas (cm), Longitud de las raíces (cm), Grosor del tallo (mm), Masa fresca (g), Días transcurridos hasta el trasplante. Para el análisis estadístico de los datos obtenidos se empleó un ANOVA de clasificación simple y una prueba de Comparación múltiple de media por Tukey para el 5 % de probabilidad del error con el Paquete Estadístico ESTATITICA Versión 10 sobre Windows.Los mejores resultados se obtienen cuando se aplican los productos QuitoMax y Pectimorf, por aspersión foliar a los 10 días después de la germinación correspondiente a los tratamientos 2 y 3.
Referencias
Abreu, E. et al,. (2018). Efecto de la acción combinada de fertilizantes químicos y humus de lombriz enCapsicum annum. Vol.45, No.1, enero-marzo, 52-61, 2018.CE: 1677 CF: cag071182162. Revista Centro Agrícola.
Alemán, R et al,. (2018) Indicadores morfofisiológicos y productivos del pimiento sembrado en invernadero y a campo abierto en las condiciones de la Amazonía ecuatoriana. Vol.45, No.1, enero-marzo, 14-23, 2018CE: 1668 CF: cag021182157Revista Centro Agrícola
Benítez, B.; Soto, F.; Yong, A. y Núñez, M. (2008). ‘‘Crecimiento de plantas de palma areca (Dypsislutescens, H.Wendel) con aspersiones foliares de una mezcla de oligogalacturónidos’’. Cultivos Tropicales, vol. 29, no. 3, septiembre de 2008, pp. 81-85, ISSN 0258-5936.
Borbón, A. (2017). “Producción de tres híbridos de pimiento (Capsicumannuum) a partir de semillas sometidas a imbibición e imbibición más campo magnético en el campo experimental Río Verde. Tesis de grado. La Libertad. Ecuador. p-102
Casanova, AS. (2007). Manual para la producción protegida de hortalizas. 2da ed. La Habana: Instituto de Investigaciones Hortícolas Liliana Dimitrova; 2007. 112 p
Chibu, H.; Shibayama, H. y Arima, S. (2012). ‘‘Effects of Chitosan Application on the Shoot Growth of Rice and Soybean’’. Japanese journal of crop science, Vol. 71, no. 2, pp. 206-211, ISSN 1349-0990, 0011-1848, DOI 10.1626/ jcs.71.206.
Falcón A. et al,. (2015). Nuevos productos naturales en la agricultura. Cultivos Tropicales, 2015, vol. 36, no. especial, pp. 111-129
González, L.G. et al., (2017). Evaluación de la aplicación de quitosana sobre plántulas de tabaco (Nicotianatabacum L.) Vol.44, No.1, enero-marzo, 34-40, 2017 CE: 9915 CF: cag051172109 Revista Centro Agrícola
Hadwiger, L. A. (1999). Method for treating cereal crop seed with chitosan to enhance yield, root growth and stem strength[en línea]. no. US 4886541 A, Inst. Washington State University Research Foundation, 12 de diciembre de 1999, [Consultado: 1 de diciembre de 2018], Disponible en: <http://www. google.com/patents/US4886541
Iriti, M.; Picchi, V.; Rossoni, M.; Gomarasca, S.; Ludwig, N.; Gargano, M. y Faoro, F. (2009). ‘‘Chitosan antitranspirant activity is due to abscisic acid-dependent stomatal closure’’. Environmental and Experimental Botany, vol. 66, no. 3, septiembre de 2009, pp. 493-500, ISSN 0098-8472, DOI 10.1016/j.envexpbot.2009.01.004
Izquierdo, H. I.; González, M. C.; Núñez, M.; Proenza, R. y Cabrera, J. (2009). Influencia de un oligogalacturónido en la aclimatización de vitroplantas de banano (Musa spp.) del clon FIAH-18 (AAAB). CultivosTropicales, 2009, vol. 30, no. 1, p. 37-42.
Maboko, M. M.; Du Plooy, C. P. &Chiloane, S. (2012).Effect of plant population, stem and flower pruning on hydroponically grown sweet pepper in a shadenetstructure.AfricanJournal of AgriculturalResearch. 7(11): 1742-1748.
MINAG. (2017). Manual Técnico de Organopónicos y Huertos Intensivo.InstitutodeInvestigacionesFundamentalesenAgriculturaTropical.Agricultura Urbana.
Rodríguez, Yaritzaet al,. (2018). Nuevas combinaciones híbridas de pimiento para el sistema de cultivo protegido en Cuba. Cultivos Tropicales, 2018, vol. 39, no. 1, pp. 93-101
Santana, Y. (2016). Efecto deTrichodermaharzianumRifai y FitoMas-E como bioestimulantes de la germinación y crecimiento de plántulas de tomate. Centro Agrícola, 43 (3): 5-12; julio-septiembre, 2016
Sarduy, Mairelyet al,.(2016). Sustratos y soluciones nutritivas para la obtención de plántulas de pimiento y su influencia en la producción en cultivos protegido. Centro Agrícola, 43 (4): 42-48; octubre-diciembre, 2016. ISSN papel: 0253-5785 ISSN on line: 2072-2001
Terry, E. A.; Terán, R.; Martínez-Viera, R. y Pino, M. A.(2002). “Biofertilizantes, una alternativa promisoria para la producción hortícola en organopónicos”. Cultivos Tropicales, vol. 23, no. 3, pp. 43-47, ISSN 0258-5936, 1819-4087.
Terry, Elein; Leyva, A.; Díaz, María M. (2006) Biofertilizantes y productos bioactivos, alternativas para la asociación maíz-tomate en el período temprano de siembra Cultivos Tropicales, vol. 27, núm. 2, 2006, pp. 5-11
